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二代测序的定量原理?

时间:2024-06-20 12:26|来源:未知|作者:admin|点击:0次

一、二代测序的定量原理?

第二代测序(Next-generation sequencing,NGS)又称为高通量测序(High-throughput sequencing),是基于PCR和基因芯片发展而来的DNA测序技术。

1.目标DNA剪切为小片段•

2. 单个小片段DNA分子结合到固相表面•

3. 单分子独立扩增•

二、sanger测序和二代测序的区别?

sanger.测序通量低,一次只能对单一的分子测序,如果是混合物,会出现杂峰,但测序长度比较长。

二代测序的通量高,缺点是测序读长较短。

三、微测序原理?

单细胞测序测序主要包括四个步骤:单细胞分离→全基因组扩增→高通量测序→数据分析。

单细胞测序原理是通过在单个细胞水平上进行测序,解决了用组织样本无法获得不同细胞间的异质性信息或样本量太少无法进行常规测序的难题,为科学家研究单个细胞的行为、机制等提供了新的方向。

四、ngd测序原理?

NGD测序原理是指通过Next Generation DNA Sequencing(第二代DNA测序技术)实现对DNA序列的高通量、高效率、高准确性的测序过程。NGD测序技术通常分为两个主要步骤:文库构建和测序。1. 文库构建: - DNA样本准备:将待测DNA样本提取并纯化。 - DNA片段化:将DNA样本切割成较小的片段,一般为几百个碱基对长。 - 末端修复:在DNA片段两端进行修复,以便后续连接适配体。 - 适配体连接:将特定序列的适配体连接到片段的两端,以便后续测序。 - PCR扩增:利用特定引物进行PCR扩增,以增加适配体连接片段的数量。 - 文库纯化:通过凝胶电泳、磁珠等方法对扩增产物进行纯化。2. 测序: - 文库负链化:将DNA片段与适配体进行解链,获得template strand和complementary strand。 - 测序引物结合:将特定序列的引物与文库中的DNA片段结合。 - PCR扩增和聚合酶结合:进行多轮PCR扩增和聚合酶结合,使DNA片段的数量倍增。 - 测序反应:通过添加荧光染料的双脱氧核苷酸(ddNTP)和DNA聚合酶,使DNA链延伸过程中停止,并记录每个碱基的信号发光。 - 信号识别和数据生成:通过荧光信号的强度和位置,识别每个碱基的顺序,并生成测序数据。 - 数据分析:将测序数据与参考基因组序列进行比对,进行序列重组和变异等分析。总的来说,NGD测序原理是通过逐个测定DNA的碱基序列,并将其转化为计算机可识别的数据,从而实现对DNA序列的准确、高效、高通量测序。

五、mrna测序原理?

mRNA测序是一种用于检测和分析细胞中mRNA序列的技术。它通过将细胞中的mRNA转录成cDNA,并使用高通量测序技术进行测序,从而获得mRNA的序列信息。mRNA测序的原理包括以下几个步骤:

1. RNA提取:首先需要从细胞或组织中提取总RNA,其中包括mRNA。

2. mRNA纯化:使用特定的试剂或技术,如poly(A)尾寡聚核苷酸纯化,将mRNA从总RNA中分离和富集出来。

3. cDNA合成:通过逆转录反应,将mRNA转录成与之互补的cDNA,以便进行后续的DNA测序。

4. 文库构建:将合成的cDNA片段连接到测序文库中,其中每个cDNA片段都与特定的适配器序列相连。

5. 高通量测序:使用高通量测序技术,如Illumina测序平台,对文库中的cDNA片段进行测序。

6. 数据分析:将测序得到的原始数据进行质量控制和去除低质量序列,然后进行序列比对、基因表达量计算、差异表达分析等生物信息学分析。

通过mRNA测序,可以获得细胞中活跃转录的基因的信息,帮助研究人员理解细胞的基因表达调控机制、发现新的基因和转录本、识别差异表达的基因等。

六、illumina测序原理?

Illumina测序原理主要包括以下几个步骤:

文库片段附着到“flowcell上的oligo”:DNA文库两头的序列和芯片上的引物碱基互补,因此可以通过氢键力互补杂交。 待测序的DNA片段通过氢键力与第一种oligo配对从而固定在flowcell上。

被文库片段附着的oligo延伸出互补的DNA链:加入DNA聚合酶和dNTP,flowcell上的oligo做引物,以文库片段为模版,合成出一条全新的DNA链(和原来的文库片段序列完全互补)。

冲走文库片段:加入NaOH碱溶液,破坏氢键力,模版链(文库片段)被冲走,只剩下与芯片通过共价键连接的DNA链。

扩增:使用高通量测序仪对DNA链进行扩增,得到测序结果。

以上是测序的基本原理,具体操作还会受到测序仪的型号、测序的序列、测序的数据分析方法等多种因素的影响。

七、sage测序原理?

SAGE的主要依据有两个。

第一,一个9~10碱基的短核苷酸序列标签包含有足够的信息,能够唯一确认一种转录物。例如,一个9碱基顺序能够分辨262144个不同的转录物(49),而人类基因组估计仅能编码80000种转录物,所以理论上每一个9碱基标签能够代表一种转录物的特征序列。

第二,如果能将9碱基的标签集中于一个克隆中进行测序,并将得到的短序列核苷酸顺序以连续的数据形式输入计算机中进行处理,就能对数以千计的mRNA转录物进行分析。

八、ont测序原理?

NT测序是新一代基于纳米孔的单分子实时电信号测序技术,其各平台的测序原理相同。

DNA/RNA链在马达蛋白的带领下与镶嵌在生物膜上的纳米孔蛋白结合并解螺旋,在生物膜两侧电压差的作用下,DNA/RNA链以一定的速率通过纳米孔通道蛋白,由于DNA/RNA链上不同碱基化学性质存在差异,所以当单个碱基或DNA/RNA分子通过纳米孔通道时,会引起不同电学信号的变化。

通过对这些信号进行检测及对应,即可计算获得相应碱基的类型,完成序列的实时测定。

九、一代测序和二代测序的区别?

二代测序相比一代测序大幅降低了成本,保持了较高准确性,并且大幅降低了测序时间,将一个人类基因组从3年降为1周以内,但在序列读长方面比起第一代测序技术则要短很多,这也给三代测序提供了发展空间。

一代测序:又称Sanger测序

原理:ddNTP的2'和3'都不含羟基,其在DNA的合成过程中不能形成磷酸二酯键,可以用来中断DNA合成反应。在4个DNA合成反应体系(含dNTP)中分别加入一定比例带有标记的ddNTP(分别为ddATP、ddCTP、ddGTP和ddTTP),通过凝胶电泳和放射自显影后可以根据电泳带的位置确定待测分子的DNA序列。

二代测序:NGS技术(多分子,多克隆)

背景:Sanger测序虽读长较长、准确性高,但由于其测序成本高、通量低等缺点,难以在de novo测序、转录组测序等方面普及应用。经过不断的技术开发和改进,以Roche公司的454技术、illumina公司的Solexa、Hiseq技术,ABI公司的Solid技术为标志的第二代测序技术诞生,后起之秀Thermo Fisher的Ion Torrent技术近年来也杀入历史舞台。

1、Illumina 原理:

桥式PCR+4色荧光可逆终止+激光扫描成像

主要步骤:

①DNA文库制备—超声打断加接头

②Flowcell—吸附流动DNA片段

③桥式PCR扩增与变性—放大信号

④测序—测序碱基转化为光学信号

特点:Illumina的这种测序技术每次只添加一个dNTP的特点能够很好的地解决同聚物长度的准确测量问题,它的主要测序错误来源是碱基的替换。而读长短(200bp-500bp)也让其应用有所局限。

2、Roche 454

油包水PCR + 4种dNTP车轮大战 + 检测焦磷酸水解发光

十、nanopore测序仪原理?

新型纳米孔测序法(nanopore sequencing);采用电泳技术。

Nanopore测序当中的核心部件是这个由蛋白质构成的纳米级的小孔,我们称之为“Pore”。

这个蛋白质插在一层电阻率很高的薄膜当中。薄膜的两侧都浸没在含有离子的buffer当中。在薄膜的两侧加上不同的电位,离子就会通过蛋白质小孔,从膜的一侧移动到膜的另一侧,小孔当中就会有电流通过。当DNA的单链通过这个小孔的时候,就会对离子的流动造成阻碍。不同的碱基造成的阻碍大小是不一样的。这样,不同的碱基所造成电流大小的波动,就被记录下来

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